PiErGy

Tantissimi auguri anche qui!

Ciao Luigi, c'è questa discussione piena di ottimi suggerimenti in merito: http://forum.aracnofilia.org/topic/17895-salemi-tp-amblyocarenum-sp-suggerimenti-su-come-distinguere-amblyocarenum-e-cteniza/ Secondo me il modo più facile per distinguere gli immaturi e le femmine adulte di questi generi è controllare le spine sulle zampe anteriori: Cteniza presenta robuste spine, Amblyocarenum non ne ha di evidenti (ma attenzione perché le ha sui pedipalpi). I maschi adulti sono ben diversi e basta guardare la lunghezza dei pedipalpi.

Grazie Faby! Per Gaborri: già, rimuovere l'ovisacco sarebbe stata la cosa più prudente da fare o, in alternativa, spostare la femmina e lasciare l'ovisacco nel terrario. Ma osservavo comportamenti positivi della femmina che, oltre a sorvegliare le uova, periodicamente rafforzava l'ovisacco con nuovi strati di seta. Dopo aver visto il temburellare sull'ovisacco mi ero deciso a vedere lo svolgersi del tutto il più naturalmente possibile. Foto della femmina su carta millimetrata: ​

Ciao a tutti, documento questo tentativo di riproduzione di Eucratoscelus pachypus che, purtroppo, non si è concluso con il lieto fine. Spero comunque che possa in qualche modo essere utile per chi in futuro cercherà di riprodurre questa specie. La femmina, piuttosto giovane e sui 4 cm di corpo, era stabulata in un faunabox medio (23x15x17) con un alto strato (9-11 cm) di torba di sfagno ed una corteccia di sughero posta obliqua su un lato e praticamente non utilizzata se non per tesserci sopra. Il ragno era lì già da molti mesi ed aveva costruito - come del resto gli altri esemplari che ho ed ho avuto - un profondo cunicolo; piuttosto particolare l'apertura, fortemente irrobustita con seta e torba e dalla forma ad imbuto. Gli esemplari si sono accoppiati due volte, la prima il 20 maggio e la seconda il 3 giugno. Sebbene la femmina fosse inizialmente ostile, il maschio in entrambi i casi non ha avuto problemi a bloccare con le zampe anteriori i cheliceri della femmina per poi inserire i bulbi con assoluta tranquillità. Questo è un breve video della prima parte di corteggiamento ed accoppiamento, durato in totale all'incirca un quarto d'ora: ​ Esattamente 3 mesi dopo il primo accoppiamento, in data 20 agosto, la femmina ha costruito un'amaca di seta in corrispondenza del bordo dell'apertura del cunicolo e deposto le uova lì sospese. Questa foto è stata fatta durante la deposizione, è sfuocata ma non potevo rischiare di disturbare eccessivamente la femmina con più luce o aprendo il contenitore. Si vede la massa di uova appena deposte: ​ Foto scattate in seguito, il 26 agosto, alla femmina che sorveglia l'ovisacco ultimato: ​ ​ Purtroppo, in data 16 settembre e non diversamente da come aveva già fatto l'anno precedente, la femmina ha mangiato le uova. Sono riuscito a osservarla mentre lo stava facendo: rimanevano solo 3-4 uova e le stava divorando; ho fatto una foto prima di intervenire e provare a recuperarle: ​ Le uova, per quanto integre, apparivano comunque compromesse poiché ricoperte da una patina probabilmente dovuta ai resti delle altre che eran state mangiate. Il tentativo di incubarle artificialmente non è andato a buone fine. Mi viene poi il forte sospetto che non fossero comunque fertili e che la femmina se ne sia nutrita per questo motivo: penso sia piuttosto strano che in quasi un mese nell'ovisacco, a una temperatura alta (sempre superiore ai 28°C, mai oltre i 32°) lo sviluppo delle uova fosse così poco avanzato. Ho tra l'altro notato, qualche giorno prima, la femmina tamburellare sopra l'ovisacco in modo molto insolito, che non mi era mai capitato di osservare in un Theraphosidae. Non posso esserne certo ma non escluderei che fosse un modo per vagliare lo stato di salute di uova o potenziali larve. Dopo aver recuperato le uova, ho provato ad osservarle alla luce di una torcia per vedere se riuscivo a distinguere degli embrioni in formazione ma con scarsi risultati: ​ Mi dispiace molto sia andata così, tra l'altro piuttosto inspiegabilmente. Nell'eventualità di reperire qualche maschio di questa specie, ci riproverò in futuro. Posterò a breve una foto della femmina su carta millimetrata per chiarire senza ambiguità le dimensioni dell'esemplare.

Concordo con te, la foto non è chiarissima ma sembrerebbe lui.

E' un esemplare femmina di Araneus quadratus, specie non rara me nemmeno così comune come altre del suo genere.

Un paio di esemplari han mutato, l'esuvia per adesso è attaccata all'esterno della sacca di seta: ​

Sì, il pattern è quello tipico di Araneus quadratus.

Concordo per Lycosoides ma nel Nord Africa c'è un buon numero di specie e non saprei andare con sicurezza oltre il genere.

No, è Zoropsis spinimana.

Foto di un'altra predazione: ​ ​

Condivido osservazioni e qualche foto delle giovanissime Uroctea durandi che sto cercando di crescere e allevare. Sono di prima muta e misurano sui 2 mm; sarà anche per le ridotte dimensioni e per il fatto che non so esattamente come stabularle ma non mi sembrano molto semplici da tenere. Me ne son morti diversi esemplari e, mentre alcuni rispondono bene alla cattività e catturano con successo prede piuttosto grandi in proporzione a loro, altri non sembrano essere altrettanto abili o aggressivi e stentano a nutrirsi. Tra l'altro, sebbene siano abili a bloccare le prede usando le zampe posteriori - in modo non dissimile da Oecobius - risultano piuttosto lenti e poco inclini ad allontanarsi dall'area compresa dai raggi di seta che si estendono attorno alla sacca di seta dove stazionano. Le sto tenendo in barattolini per contaglobuli con substrato di torba quasi asciutta e con un pezzo di carta assorbente che le agevola nell'arrampicarsi, tessere e rifugiarsi; le nutro usando piccoli coleotteri come Stegobium paniceum e Tribolium sp. Due esemplari all'interno della loro sacca di seta; i coleotteri vivi e morti che si vedono sono Stegobium paniceum: Esemplare nella sua sacca di seta, in questo caso parzialmente ricoperta di detriti: ​ ​​ ​Qui la quantità di detriti utilizzata è ancora maggiore ed il ragno risulta completamente nascosto: ​ Due Uroctea durandi alle prese con Stegobium paniceum. Nella prima foto il ragno ha finito di imbozzolare la preda, lo ha trasportato all'interno del rifugio e si appresta a nutrirsi; nella seconda un altro esemplare sta avvilluppando il coleottero e sulla ragnatela si notano resti di altre prede catturate in precedenza: ​ ​ ​ ​ Se qualcuno ha idee, suggerimenti, esperienza con questa specie... Sono assolutamente ben accolti. Soprattutto perché, come detto, l'allevamento per ora non sta procedendo molto bene. ​

E' totalmente cieco come Cryptops e fino a non molto tempo fa era inserito nella stessa famiglia (Cryptopidae); ora dovrebbe essere in una famiglia a parte (Plutoniumidae) ma non ne sono certo, leggo informazioni contrastanti. Sicuramente è una specie elusiva che solo raramente affiora allo scoperto e concordo che potrebbe essere una risposta (o comunque una motivazione aggiuntiva) al perché i report di questa specie siano così pochi.

Spostata Complimenti anche qui! E' di certo uno dei chilopodi italiani più rari e meno conosciuti, è un report di grande valore.

Parrebbe un esemplare di Steatoda grossa dall'addome sporco.

Sì, insolitamente rapidi nell'adattarsi e nel completare la tana rispetto ad altri trapdoor spiders. Aggiungo qualche scatto del quarto esemplare molto giovane che ho spostato oggi: ​ ​ ​

Grazie Mattia, contributo interessantissimo e molto completo, mi hai tolto molti dubbi!

Splendidi scatti, Fede! Vedo che i piccolini crescono bene!

Grazie! No Gabri, questi erano spiderling nati dalle riproduzioni di MattiaPof. E dovrebbero anche questi essere P. lugardi, ho visto le foto delle madri di questi esemplari e hanno una colorazione più "canonica". Mattia mi ha detto che anche la spermateca tornerebbe. Cercando sul web la maggior parte delle foto ritrae esemplari grigiastri, pochi sono di colore così giallastro-dorato e con quel pattern scuro sul prosoma; in molti mi han comunque detto che per essere dei P. lugardi gli sembrano strani. Le opzioni che mi vengono in mente sono 3: 1. La colorazione varia e cambia sensibilmente durante lo sviluppo e l'accrescimento (cosa che tra l'altro Mattia mi aveva accennato ma non so in che misura ciò avvenga). 2. Ci sono varietà cromatiche differenti come per altre specie dello stesso genere (P. murinus ad esempio). Questa ipotesi non necessariamente esclude la 1. 3. Si tratta di una specie diversa seppur molto simile a livello morfologico. Alcune specie di Harpactira son molto somiglianti, ad esempio.

Documento con qualche foto la riproduzione di Pterinochilus lugardi; va detto che ho dei dubbi sul fatto la specie sia effettivamente P. lugardi, i miei esemplari han tutti dei riflessi dorati piuttosto marcati e insoliti. Potrebbe comunque essere semplice variabilità. Accoppiamento, 1 febbraio 2017. E' avvenuto senza problemi ed è durato una decina di minuti. ​ Ovisacco, deposto in superficie, 31 maggio 2017. Inizialmente la femmina dopo averlo deposto non sembrava prestarci molte cure, in seguito ha iniziato a sostare costantemente sopra l'ovisacco. ​ Larve, 29 giugno 2017. Sono fuoriuscite le larve dall'ovisacco, alcune si sono ammassate in piccoli gruppi, altre vagavano nel terrario: in totale 37 esemplari. La femmina era pressoché indifferente, tranne per un'attitudine leggermente difensiva quando ho scattato le foto: si è avvicinata lentamente alzando zampe anteriori e pedipalpi ma non ha tentato di mordere. ​ ​ ​ Spiderling in vena di disperdersi, 17 luglio 2017: ​ La temperatura è oscillata dai 24-25° del mese di febbraio fino ai 27-28° di giugno-luglio. Non ho misurato l'umidità: il substrato è stato bagnato poco prima della deposizione e poi mantenuto leggermente umido solo nel lato opposto a dove si trovava l'ovisacco. Lascio a Federica l'inserimento di qualche bella foto degli spiderling

Il substrato di fibra di cocco stava ammuffendo nei contenitori di 3 dei Liphistius più giovani e ieri ho deciso di cambiarlo. Ho colto l'occasione per fare qualche foto. Attualmente i miei esemplari più giovani misurano sui 2,5 cm di corpo. Una cosa che sia io che Alvise abbiamo notato è che gli esemplari in premuta hanno una colorazione del pattern piuttosto slavata mentre quella degli esemplari post muta è più accesa e col pattern marcato . Ho spostato i 3 esemplari ieri pomeriggio, sostituendo la fibra di cocco con torba di sfagno, e stamattina tutti gli esemplari avevan già costruito la botola; uno dei 3 aveva ultimato anche la raggiera di fili attorno: ​ ​

Sì, confermo Lycosoides coarctata. La colorazione dell'area cefalica in Maimuna vestita è un po' diversa, con la linea chiara che si estende nella zona oculare; le zampe di Maimuna appaiono leggermente annulate. Stando ai dati attualmente noti a livello di distribuzione italiana, M. vestita si rinviene comunemente solo in Puglia.

E' stato bellissimo rivedervi, ecco qualche foto del raduno! Mostra al Museo, l'epica collezione Ardenghi: Linothele megatheloides, dorato e affabile: Ancylometes sp. in agguato: ​ Esperienza in grotta, Voragine di Storje. ​ Pseudoscorpione Neobisium (Blothrus) spelaeum istriacum: ​ ​ Immaturo di Stalita taenaria: Femmina di Stalita taenaria in una galassia di cristalli di carbonato di calcio: ​ Una tipica Malayka troglossena: ​ ​ E infine uscimmo a riveder Ochlodes sylvanus sulla fronte di Gaborri: ​ Trieste di notte: ​ ​

Già, mi dispiace dirtelo ma ora Dictyna civica, D. innocens, D. vicina e D. latens sono genere Brigittea.