Alb83

Quel ragno mi sembra un Araneus diadematus o comunque Araneus sp.. E' vero che i ragni sono tutti volenosi, tranne qualche raro caso, ma non vuol dire che sono pericolosi per l'uomo. Dire che l'Argiope è mediamente pericolosa mi pare eccessivo..

Non cresce molto, tranne alcuni casi le dimesioni delle specie appartenenti al genere Pardosa sono abbastanza ridotte.

Confermo anch'io Pardosa gruppo lugubris maschio, però mi sembra un giovane. Per conoscere la specie esatta avresti problemi anche sotto al microscopio visto che fa parte di un gruppo con 6 specie criptiche molto simili come morfologia e forma del palpo.

Ciao a tutti, sono contento che il mio lavoro sia piaciuto a molti , peccato per i problemi tecnici!!! Spero che qualcosa si sia capito, nel caso non vi sia chiaro qualcosa chiedetemi pure qua sul forum! Per me è stata una giornata fantastica! Soprattutto vedere così tanta gente interessata a questi argomenti e condividere il "palco" con persone davvero importanti in campo araneologico! Per un pivello come me che studia la famiglia Lycosidae da un paio di annetti avere davanti il Prof. Paolo Tongiorgi fa un certo effetto!

Semplicemente perchè le drosophile sono comode da allevare e sempre disponibili... le mosche le devi cercare attivamente

Dalla descrizione dei maschi avrei pensato ad una Pardosa del gruppo lugubris... più che altro per la banda chiara molto netta (ma sul carapace o sull addome?) e per la densità.. Però le femmine non mi convincono

La fonte di cibo più comoda sono sicuramente le drosophile.. Ti fai un paio di allevamenti e sei a posto per un po' (in giro nel forum è spiegato come allevare le drosophile se non sbaglio..)

Veramente bello!

Emanuele è decisamente più professionale!!

I barattoli rimangono aperti e quando li chiudi fai veloce per non far scappare le drosophile! Qualcuna scappera ma non tutte. Poi da li le travasi nei barattoli con il substrato da te preparato e aspetti.

La ricetta non l'ho inventata io, anche se sto provando a modificarla. L'aspira moschini invece l'ho inventato (anche se comunque gli aspiratori sono piuttosto comuni nel mondo degli entomologi ) Per far partire l'allevamento metto fuori un barattolo (non ho ancora capito qual è la posizione più strategica, se metterlo al sole all'ombra o una via di mezzo) con dentro vino più qualche fetta di banana. Lo lasci li uno o due giorni e dovrebbe riempirsi di drosophile. (adesso però credo faccia già troppo freddo) Per la resa non saprei dirti però da un barattolo che parte con 10-15 individui, dopo 3 settimane, massimo un mese, ottieni una quantità di moschini enorme.

Sono contento di avere stuzzicato il tuo interesse Io non ho una mia collezione (preferisco fotografare ), se al mio "boss" non servono te li do volentieri. Se hai una Lycosa viva da darmi mi fai felice!

Allora... io a casa ho 6 barattoli con dentro l'impasto e le drosophile, non separo le larve dagli adulti perchè non saprei praticamente come fare. Per il prelievo può sembrare disgustoso ma uso questo: In pratica da una cannuccia aspiro la drosophila dal barattolo (con il tappo bucato), la cannuccia ovviamente è chiusa da una rete che fa in modo che il dittero rimanga nel barattolino. Anche questo piccolo contenitore ha un foro, chiuso con il cotone, dal quale faccio cadere la drosophila nella provetta\teca. Se hai una luce è più facile aspirare le dorsophile nel punto desiderato. Sicuramente è tutto più facile da fare che da spiegare hehe! Il substrato lo cambio quando vedo che l'allevamento si è bloccato, pulisci il barattolo e ricominci da capo. ( sconsiglio di farlo subito dopo mangiato )

Per quanto riguarda la biologia del salticide non saprei dirti e rischierei di fornirti parecchie inesattezze.. Quello che ho allevato io non ha fatto la muta. Per le drosophile io uso un miscuglio con zucchero+farina+acqua mischiati in un recipiente, poi metto a bollire dell'acqua nella quale verso il composto cremoso. Alla fine aggiungo lievito e agar. Di solito faccio più allevamenti in parallelo perchè non sempre "partono" rapidamente! In giro sulla rete si trovano parecchi metodi (anche su questo forum), il più semplice credo sia quello con la banana..

Grazie a tutti per i preziosi consigli! Vi terrò informati... Su questo si può anche discutere, ma c'è modo e modo per esprimere la propria opinione. Ribadisco ancora i ringraziamenti!

Cosa intendi per come fa la muta? Onestamente non so di quanta umidità abbia bisogno, io comunque avevo usato una bottiglia tagliata a meta e al posto del tappo avevo messo del cotone umido, come fondo usavo del terriccio (avevo anche aggiunto qualche pietra e rametti per riparo). Quello che avevo trovato io però era nella lettiera di un castagneto che ha un buon livello di umidità.

Se hai un bell'allevamento di drosophile non credo ci siamo grossi problemi.. Io ne ho allevato uno per un po' di tempo, poi l'ho liberato, molto bello ma mi sfugge il nome in questo momento... edit. Saitis barbipes

A me non piace osteggiare (forse intendevi ostentare?) niente... era solo per dire le specie che sto allevando.. (anche perchè mi sto facendo un discreto mazzo quindi leggere commenti del genere mi fa un po' cadere le braccia) Ovviamnete è per la tesi... studio sui display di corteggiamento.. Il blog l'ho tolto perchè non era aggiornato da marzo e mi faceva parecchia tristezza Le provette comunque sono grosse non sono piccole. Può sembrare semplice sostiturilo con altro ma non credo lo sia. Sia per una questione di numero che di allevamento pratico... poi sicuramente ci sarà qualcuno più bravo di me che riesce

Il blog è da un po' che non lo aggiorno hehe... Il problema dello spazio me lo sono posto anch'io, le altre specie sono più piccole tranne amentata che è abbastanza grande; come appiglio hanno il cotone, è sempre andato bene non capisco perchè non riescono (che poi per trovarli devo tornare in montagna) Adesso provo a spostarli in contenitori più grandi... p.s. può sembrare brutto tenere gli animali in quelle condizioni ma per quello che so io è il metodo più semplice per allevarli e soprattutto per nutritli con le drosophile. Adesso avrò più di 50 pardose di specie diverse..

Purtroppo non posso più fotografarlo, 2 maschi sono morti allo stesso modo, cioè dovevano solo più far uscire le zampe mentre il cefalotorace e l'addome erano fuori, mentre la femmina che è morta aveva soltanto le filiere attaccate all'esosceletro vecchio... L'umidità è la stessa che uso per altre pardose (hortensis, lugubris, amentata, wagleri), begno un batuffolo di cotone che funge anche da tappo del provettone.

Ciao a tutti, Sto allevando qualche esemplare di Pardosa saturatior che però non riescono a fare la muta finale, mi sono morti già 4 ragni... non riesco a capire il motivo. Può essere che essendo un ragno di quota è abituato a temperature più basse rispetto ad un alloggio? (vive tra i 1500 e i 1800) Con altre pardose non ho mai avuto problemi di questo tipo, anche con Pardosa wagleri che è la specie sorella. Qualcuno ha qualche idea per risolvere il problema?

Il fatto è che ne ho prese un po' e hanno dimensioni diverse, vanno da meno di 1 cm la più piccola fino a 2 la più grande.

Oggi mi sono trovato sul terrazzo un' enorme quantità di bruchi, mi piacerebbe sapere se dallo stadio larvale si può già risalire a che specie di farfalla si tratta. E' fattibile un allevamento? Foto: (fatte abbastanza male )

Peccato per il numero di zampe...

penso si tratti di un microscopio elettronico a scansione.. ma non vorrei dire cavolate.. Da Wikipedia: Funziona in un modo analogo ad un sistema televisivo a circuito chiuso. La superficie del campione viene colpita da un fascio di elettroni, che esplora la superficie per mezzo di una bobina deflettrice, muovendosi come su uno schermo televisivo (il numero di righe per quadro è regolabile, tra 100 e 2.000). Gli elettroni secondari generati punto per punto dalla superficie vengono raccolti da un elettrodo collettore a 200 V. L'elettrodo produce un segnale elettrico, che modula i fascio elettronico sullo schermo, percorso in sincronia col fascio primario: sullo schermo si forma così una immagine avente grande profondità di fuoco. L'unico limite di questo strumento è la necessità di operare in condizioni di vuoto elevato: per questo è stato sviluppato il microscopio elettronico ambientale a scansione che, libero da questo vincolo, è in grado di analizzare campioni di materiale organico conservandone le condizioni di temperatura, pressione ed umidità.